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琼脂糖凝胶纯化回收试剂盒

发布日期:2020/4/22 10:39:57

背景及概述[1]

琼脂糖凝胶纯化回收试剂盒采用可以高效、专一结合的 DNA 硅基质材料和独特的缓冲液系统,从 TAE 或 TBE 琼脂糖凝胶上回收 DNA 片段,同时除去蛋白质、其他有机化合物、无机盐离子及寡核苷酸引物等杂质。可回收 100bp-10kb 大小的片段,回收率大于 80%(小于 100bp 和大于 100kb 的 DNA 片段回收率为 30-50%)。使用本试剂盒回收的 DNA 可适用于各种常规操作,包括酶切、PCR、测序、文库筛选、连接和转化等试验。

注意事项

1. 电泳前更换成新的电泳缓冲液,以免影响电泳和回收效果。

2. 如下一步实验要求较高,则应尽量使用 TAE 电泳缓冲液。

3. 切胶时,紫外照射时间应尽量短,以免对 DNA 造成损伤。

4. 回收小于 100bp 和大于 100kb 的 DNA 片段时,应加大溶胶液的体积,延长吸附和洗脱的时间。

5. 回收率与初始 DNA 量和洗脱体积有关,初始量越少、洗脱体积越小,回收率越低。

6. 如非指明,所有离心步骤均为使用台式离心机在室温下离心。

操作步骤[1]

1、琼脂糖凝胶电泳后,将单一的目的 DNA 条带从琼脂糖凝胶中切下(尽量切除多余部分),放入干净的离心管中,称取重量。

2、向胶块中加入 3 倍体积溶胶液(如果凝胶重为 0.1g,其体积可视为 100ul,则加入 300ul 溶胶液),50-55℃水浴放置 10min,期间不断温和地上下翻转离心管,以确保胶块充分溶解。注意:溶胶时,如果溶胶液变为红色(正常情况下为淡黄色),可向含有 DNA 的胶溶液中加入 10-30ul3M 醋酸钠(pH5.2)将胶溶液调为淡黄色,否则将会影响 DNA 与吸附柱的结合,影响回收效率。

3、将上一步所得溶液加入一个吸附柱中(吸附柱放入收集管中),12000rpm 离心 30-60 秒,倒掉收集管中的废液,将吸附柱重新放入收集管中。  注意:胶块完全溶解后将胶溶液温度降至室温再上柱,因为吸附柱在较高温度时结合 DNA 的能力较弱。

4、向吸附柱中加入 600ul 漂洗液(使用前请先检查是否已加入无水乙醇),12000rpm 离心 1min,弃废液,将吸附柱放入收集管中。

5、向吸附柱中加入 600ul 漂洗液,12000rpm 离心 1min,弃废液,将吸附柱放入收集管中。

6、12000rpm 离心 2min,尽量除去漂洗液。将吸附柱敞口置于室温或 50℃温箱放置数分钟,目的是将吸附柱中残余的漂洗液去除,防止漂洗液中的乙醇影响后续的实验。

7、将吸附柱放入一个干净的离心管中,向吸附膜中央悬空滴加适量经 65℃水浴预热的洗脱液,室温放置 2min,12000rpm 离心 1min。注意:1)、为了增加回收效率,可将得到的洗脱液重新加入吸附柱中,12000rpm 再次离心 1min。

2)、洗脱缓冲液体积不应少于 30ul,体积过小影响回收效率。3)、洗脱液的 pH 值对于洗脱效率有很大影响,若用水做洗脱液应保证其 pH 值在 7.0-8.5 之间。

8、DNA 产物-20℃保存。

主要参考资料

[1] 琼脂糖凝胶 DNA 回收试剂盒说明书

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